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<div id="mw-content-text" class="mw-body-content mw-content-ltr" lang="de" dir="ltr"><div class="mw-content-ltr mw-parser-output" lang="de" dir="ltr"><p>Als <b>PBMC</b> (<a href="Akronym" title="Akronym">Akronym</a> für englisch <i>Peripheral Blood Mononuclear Cell</i>; deutsch: ‚mononukleäre Zellen des peripheren Blutes‘) werden einkernige <a href="Zelle_(Biologie)" title="Zelle (Biologie)">Zellen</a> des <a href="Blut" title="Blut">Blutes</a> bezeichnet, die einen runden <a href="Zellkern" title="Zellkern">Zellkern</a> besitzen. Dies sind zum Beispiel <a href="Lymphozyt" title="Lymphozyt">Lymphozyten</a> und <a href="Monozyt" title="Monozyt">Monozyten</a>. Diese Zellen spielen eine wichtige Rolle im <a href="Immunsystem" title="Immunsystem">Immunsystem</a> bei der Bekämpfung von <a href="Infektion" title="Infektion">Infektionen</a>.
</p><p>PBMC werden häufig in der <a href="Diagnostik" class="mw-redirect" title="Diagnostik">Diagnostik</a> als Indikator für vorliegende Infektionen, als <a href="Prognose" title="Prognose">Prognosefaktor</a> des Verlaufs einer <a href="HIV" title="HIV">HIV</a>-Infektion und in der klinischen Forschung genutzt. Auch in der HIV-Forschung wird sehr oft mit PBMC gearbeitet, da diese auch die CD4+ Zellen (die Zellen, die vom <a href="Humanes_Immundefizienz-Virus" class="mw-redirect" title="Humanes Immundefizienz-Virus">HI-Virus</a> infiziert werden) einschließen.
</p><p>PBMC werden durch <a href="Dichtegradientenzentrifugation" title="Dichtegradientenzentrifugation">Dichtegradientenzentrifugation</a> durch ein <a href="Hydrophil" class="mw-redirect" title="Hydrophil">hydrophiles</a> <a href="Kolloid" title="Kolloid">Kolloid</a> aufgereinigt, das entweder aus <a href="Saccharose-Epichlorhydrin-Copolymer" title="Saccharose-Epichlorhydrin-Copolymer">Saccharose-Epichlorhydrin-Copolymeren</a> (<i>Ficoll</i>, <i>Histopaque</i>), aus <a href="Kieselgel" title="Kieselgel">Kieselgel</a> (<i>Percoll</i>, <i>Sepracell</i>), aus <a href="Vernetzung_(Chemie)" title="Vernetzung (Chemie)">quervernetzten</a> <a href="Dextrane" title="Dextrane">Dextranen</a> (<i>Macrodex</i>) oder aus <a href="Gelatine" title="Gelatine">Gelatine</a> (<i>Plasmagel</i>) besteht.<sup id="cite_ref-1" class="reference"><a href="#cite_note-1"><span class="cite-bracket">[</span>1<span class="cite-bracket">]</span></a></sup><sup id="cite_ref-2" class="reference"><a href="#cite_note-2"><span class="cite-bracket">[</span>2<span class="cite-bracket">]</span></a></sup><sup id="cite_ref-3" class="reference"><a href="#cite_note-3"><span class="cite-bracket">[</span>3<span class="cite-bracket">]</span></a></sup><sup id="cite_ref-4" class="reference"><a href="#cite_note-4"><span class="cite-bracket">[</span>4<span class="cite-bracket">]</span></a></sup>
</p>
<div class="mw-heading mw-heading2"><h2 id="Literatur">Literatur</h2></div>
<ul><li>Kirsten Gehlhar: <i>Immunologische Methoden in der Medizin</i>. Script abrufbar unter <a rel="nofollow" class="external autonumber" href="http://expneu.softimpulse.de/expneu2/lehre/biochemie/vorlesungen/regul/methoden.pdf">[1]</a> (PDF; 1,77 MB)</li>
<li>Sandro Conrad: <i>Reaktionen von Zellen des Immunsystems auf Bestrahlung mit Kohlenstoff-Ionen und Röntgenstrahlung</i>. (<a rel="nofollow" class="external text" href="http://tuprints.ulb.tu-darmstadt.de/1012/2/8260C82Ccccc.pdf">PDF</a>; 7,3 MB)</li></ul>
<div class="mw-heading mw-heading2"><h2 id="Einzelnachweise">Einzelnachweise</h2></div>
<ol class="references">
<li id="cite_note-1"><span class="mw-cite-backlink"><a href="#cite_ref-1">↑</a></span> <span class="reference-text">D. English, B. R. Andersen: <i>Single-step separation of red blood cells, granulocytes and mononuclear leukocytes on discontinuous density gradient of Ficoll-Hypaque.</i> In: <i>J. Immunol. Methods.</i> (1974), Band 5, S. 249–252. <a class="external mw-magiclink-pmid" rel="nofollow" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/4427075?dopt=Abstract">PMID 4427075</a>.</span>
</li>
<li id="cite_note-2"><span class="mw-cite-backlink"><a href="#cite_ref-2">↑</a></span> <span class="reference-text">A. Ferrante, Y. H. Thong: <i>Optimal conditions for simultaneous purification of mononuclear and polymorphonuclear leukocytes from human peripheral blood by the Hypaque-Ficoll method.</i> In: <i>J. Immunol. Methods.</i> (1980), Band 36, S. 109–117.</span>
</li>
<li id="cite_note-3"><span class="mw-cite-backlink"><a href="#cite_ref-3">↑</a></span> <span class="reference-text">M. Slifkin, R. Cumbie: <i>Comparison of the Histopaque-1119 method with the Plasmagel method for separation of blood leukocytes for cytomegalovirus isolation.</i> In: <i>J Clin Microbiol.</i> (1992), Band 30(10), S. 2722–2724. <a class="external mw-magiclink-pmid" rel="nofollow" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/1328282?dopt=Abstract">PMID 1328282</a>; <a rel="nofollow" class="external text" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC270506/">PMC 270506</a> (freier Volltext).</span>
</li>
<li id="cite_note-4"><span class="mw-cite-backlink"><a href="#cite_ref-4">↑</a></span> <span class="reference-text">C. V. Paya, A. D. Wold, T. F. Smith: <i>Detection of cytomegalovirus from blood leukocytes separated by sepracell-MN and Ficoll-Paque/Macrodex methods.</i> In: <i>J Clin Microbiol.</i> (1988), Band 26(10), S. 2031–2033. <a class="external mw-magiclink-pmid" rel="nofollow" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/2846635?dopt=Abstract">PMID 2846635</a>; <a rel="nofollow" class="external text" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC266810/">PMC 266810</a> (freier Volltext).</span>
</li>
</ol></div><!--htdig_noindex--><div><div class="zim-footer">
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